Содержание свободных жирных кислот и углеводов в подземных органах элеутерококка колючего (Eleutherococcus senticosus (Rupr. et Maxim.) Maxim.)

Цель: определение качественного и количественного содержания свободных жирных кислот и углеводов в различных образцах сырья элеутерококка, собранных на Дальнем Востоке России. Материалы и методы. В качестве образцов для исследования использовали корневища и корни элеутерококка, собранные на территории Приморского и Хабаровского краев, Амурской и Еврейской автономной областей. Компонентный состав низкомолекулярных метаболитов изучали методом газовой хроматографии с масс-спектрометрическим детектированием (ГХ-МС). Результаты. В исследованных образцах идентифицировано 3 полиола (сахароспирта), 5 сахаров и 5 жирных кислот. К группе обнаруженных полиолов относятся арабитол, маннитол, инозитол. Из жирных кислот идентифицированы пальмитиновая, маргариновая, стеариновая, линолевая и олеиновая кислоты. Из сахаров установлено наличие фруктозы, глюкозы, целлобиозы, сахарозы и рафинозы. Для каждого соединения проведена оценка количественного содержания. Среди комплекса жирных кислот наибольшее содержание отмечено для линолевой кислоты (1,15 мг/г). Показано, что доминирующими компонентами комплекса углеводов являются сахароза и глюкоза с соответствующим содержанием 12,53 мг/г и 9,29 мг/г. Среднее содержание суммы полиолов составило 1,29 мг/г, жирных кислот - 2,01 мг/г, а свободных сахаров - 29,33 мг/г. Выявлена значительная вариабельность количественного содержания не только индивидуальных веществ, но и суммы веществ разных групп. Коэффициенты вариабельности содержания отдельных веществ составили 47-199%, а суммы жирных кислот, полиолов и свободных углеводов - в пределах 61-62%. Заключение. Таким образом, установлено наличие 3 полиолов, 5 сахаров и 5 жирных кислот. Проведены количественная оценка их содержания и статистическая обработка полученных данных. Показано, что количественное содержание соединений в исследованных образцах характеризуется значительной вариабельностью.

1. Государственная фармакопея Российской Федерации. XIV издание. Элеутерококка колючего корневища и корни. 2018:6649-6660.

2. Gerontakos S., Taylor A., Avdeeva A.Y., Shikova V.A., Pozharitskaya O.N., Casteleijn D., Wardle J., Shikov A.N. Findings of Russian literature on the clinical application of Eleutherococcus senticosus (Rupr. & Maxim.): A narrative review. J Ethnopharmacol. 2021;278:114274. DOI: 10.1016/j.jep.2021.114274.

3. Huang L., Zhao H., Huang B., Zheng C., Peng W., Qin L. Acanthopanax senticosus: review of botany, chemistry and pharmacology. Pharmazie. 2011;66(2):83-97.

4. Jia A., Zhang Y., Gao H., Zhang Zh., Zhang Y., Wang Zh., Zhang J., Deng B., et al. A review of Acanthopanax senticosus (Rupr. and Maxim.) Harms: From ethnopharmacological use to modern application. J Ethnopharmacol. 2021;65(10):113586-113603. DOI: 10.1016/j.jep.2020.113586.

5. Li T., Ferns K., Yan Z.-Q., Yin S.-Y., Kou J.-J., Li D., Zeng Zh., Yin L., et al. Acanthopanax senticosus: Photochemistry and Anticancer Potential. Am J Chin Med. 2016;44(8):1543-1558. DOI: 10.1142/S0192415X16500865.

6. Liu J., Sun Ch., Yao Ch. The research of measuring eleutheroside B, eleutheroside E and flavonoid secondary metabolites content of root of Acanthopanax senticosus by UPLC MS /MS simultaneously. Journal of Jilin forestry science and technology. 2017;46(4):7-13. DOI: 10.16115/j.cnki.issn.1005-7129.2017.04.003

7. Живетьев М.А., Граскова И.А., Дударева Л.В., Столбикова А.В., Войников В.К. Изменение жирнокислотного состава в растениях при гипотермической адаптации. Journal of Stress Physiology & Biochemistry. 2010;6(4):51-65. EDN: MWDUYX.

8. O`Quin J.B., Bourassa L., Zhang D., Shockey J.M., Gidda S.K., Fosnot S., Chapman K.D., Mullen R.T., Dyer J.M. Temperature-sensitive post-translational regulation of plant ω3 fatty-acid desaturases is mediated by the endoplasmic reticulum-associated degradation pathway. J Biol Chem. 2010;285(28): 21781-21796. DOI: 10.1074/jbc.M110.135236.

9. Sakurai K., Shen C., Shiraishi I., Inamura N., Hisatsune T. Consumption of Oleic Acid on the Preservation of Cognitive Functions in Japanese Elderly Individuals. Nutrients. 2021;13(2):284. DOI: 10.3390/nu13020284.

10. Liu X., Hao J., Yao E., Cao J., Zheng X., Yao D., Zhang C., Li J., et al. Polyunsaturated fatty acid supplement alleviates depression-incident cognitive dysfunction by protecting the cerebrovascular and glymphatic systems. Brain Behav Immun. 2020;89:357-370. DOI: 10.1016/j.bbi.2020.07.022.

11. Abeywardena M.Y., Head R.J. Longchain n-3 polyunsaturated fatty acids and blood vessel function. Cardiovasc Res. 2001;52(3):361-371. DOI: 10.1016/s0008-6363(01)00406-0.

12. Якубова М.М. Экологические аспекты биохимической адаптации. Известия Академии наук Республики Таджикистан (отделение биологических и медицинских наук). 2011;174(1):77-88. EDN: ODQGIR.

13. Попова Т.С., Терёшина Н.С. Углеводы в почках и листьях черной смородины. Фармация. 2013;(8):10-13. EDN: RRSLPB.

14. Позднякова Т.А., Бубенчиков Р.А. Герань сибирская: содержание жирных и органических кислот. Фармация. 2014;(8):13-15. EDN: TCXAUZ.

15. Pharmacopoeia Commission of the Ministry of Health of the People's Republic of China. Pharmacopoeia of the People’s Republic of China. Radix et Rhizoma seu Caulis Acanthopanacis Senticosi. 2020:215-215.

16. York W.S., Darvill A.G., McNeil M., Stevenson T.T., Albersheim P. Isolation and characterization of cell walls and cell wall components, Methods in enzymology. 1986;118:3-40.

17. Standard Reference Data Program. National Institute of Standards and Technology, Gaithersburg, MD, Standard Reference Database IA. URL: http://www.nist.gov/srd/nist1a.htm