Дифференциальный клинико-морфологический подход в изучении кальцинатов плаценты

Цель: обнаружить возможные причины обызвествления плаценты, выявить закономерности между избыточным отложением фибриноида, появлением кальцификатов и различными нарушениями в системе «мать-плацента-плод». Материалы и методы исследования. Были исследованы 6089 последов и участков плацентарной ткани, из которых 193 экземпляра, удовлетворяющих цели исследования, подверглись дальнейшему изучению и были разделены на три группы (группа биологической нормы; последы, в которых отмечается отложение фибриноида без сопутствующего обызвествления; последы с выраженным отложениями солей кальция). Каждый участок плацентарной ткани для выявления структурно-функциональных изменений был изучен макро- и микроскопически по методике Милованова А.П. и Брусиловского А.И. Статистическая обработка результатов проводилась с использованием методов описательной статистики, непараметрических методов: составление таблиц сопряженности, расчет критерия χ2 Пирсона с поправкой Йейтса. Результаты. Было выявлено, что все последы, подвергшиеся изучению, имели сходные макроскопические характеристики. При микроскопическом исследовании было обнаружено, что обызвествление способствует более выраженному разобщению долек материнской части плаценты. Различные воспалительные, альтеративные процессы, а также гемодинамические нарушения в плацентарной ткани способствуют отложению солей кальция. Заключение. Инволютивные процессы, наблюдающиеся при нормальном старении плаценты, становятся наиболее выраженными при различных патологических процессах в система «мать-плацента-плод». В ходе исследования была выявлена статистически значимая зависимость между номером родов и появлением кальцификатов в плацентарной ткани. Крупноочаговые отложения солей кальция чаще наблюдались у женщин, рожавших не в первый раз.

1. Гржибовский А. М., Иванов С. В., Горбатова М. А. Экспериментальные исследования в здравоохранении. Наука и здравоохранение. 2015;(6):5-17. EDN: VIBHRP.

2. Слепцов А. Р., Слепцова Д. А. Преждевременное «старение» плаценты: миф или реальность. Пренатальная диагностика. 2018;17(4):325-330. EDN: YUKJDF.

3. Bae G.E., Hong J.S., Kim J.S., Park H.Y., Jang J.Y., Kim Y.S., Choi S.J., Oh S.Y., et al. Differential immunophenotype of macrophages in acute and chronic chorioamnionitis. J Perinat Med. 2017;45(4): 483-491. DOI: 10.1515/jpm-2015-0353.

4. Колобов А.В. Морфогенез плаценты человека и ее морфофункциональное состояние при патологии беременности. Вестник СПбГУ. Серия Медицина. 2015;(2):5-18. EDN: UHJGNT.

5. Derricott H., Jones R.L., Greenwood S.L., Batra G., Evans M.J., Heazell A.E. Characterizing Villitis of Unknown Etiology and Inflammation in Stillbirth. Am J Pathol. 2016;186(4):952-961. DOI: 10.1016/j.ajpath.2015.12.010.

6. Alves J.B., Gabani F.L., Ferrari R.A.P., Tacla M.T.G.M., Linck Júnior A. Neonatal sepsis: mortality in a municipality in Southern Brazil, 2000 TO 2013. Rev Paul Pediatr. 2018;36(2):132-140. DOI: 10.1590/1984-0462/;2018;36;2;00001.

7. Arora N., Sadovsky Y., Dermody T.S., Coyne C.B. Microbial Vertical Transmission during Human Pregnancy. Cell Host Microbe. 2017;21(5):561-567. DOI: 10.1016/j.chom.2017.04.007.

8. Pavlova T., Malutina E., Petrukhin V., Nesterov A., Bashuk I., Kolesnikov D., Concharov I. Use of methods of scanning microscopy at pathology of placenta. Virchows Archiv. 2015;467(S1):144.

9. Redline R.W. Classification of placental lesions. Am J Obstet Gynecol. 2015;213(4 Suppl):S21-28. DOI: 10.1016/j.ajog.2015.05.056.

10. Милованов А.П., Брусиловский А.И. Стандартизация методов морфометрии плаценты человека. Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1986;91(8):72-73

11. Смирнова Т.Л. Плацента. Этапы развития. Вестник Чувашского университета. 2009;(2):73-79. EDN: KWHRMV

12. Траль Т.Г., Толибова Г.Х., Серегина Д.С., Кузьминых Т.У., Беспалова О.Н. Морфологическая характеристика плацент при переношенной беременности. Медицина: теория и практика. 2019;4(S):547-548. EDN: ZAOYSE.

13. Hussein K., Peter C., Sedlacek L., Kaisenberg C.V., Kreipe H.H. Necrotizing funisitis: Histopathological indicator of occult congenital syphilis. Pathologe. 2017;38(4):312-316. (in Ger.). DOI: 10.1007/s00292-016-0177-5.

14. Ravikumar G., Crasta J., Prabhu J.S., Thomas T., Dwarkanath P., Thomas A., Kurpad A.V., Sridhar T.S. CD15 as a marker of fetoplacental endothelial immaturity in IUGR placentas. J Matern Fetal Neonatal Med. 2019;32(10):1646-1653. DOI: 10.1080/14767058.2017.1414179.

15. Vinnars M.T., Rindsjö E., Ghazi S., Sundberg A., Papadogiannakis N. The number of CD68(+) (Hofbauer) cells is decreased in placentas with chorioamnionitis and with advancing gestational age. Pediatr Dev Pathol. 2010;13(4):300-304. DOI: 10.2350/09-03-0632-OA.1.

16. Bazzano A.N., Var C., Wilkosz D., Duggal R., Oberhelman RA. Neonatal deaths in Cambodia: findings from a community-based mortality review. BMC Res Notes. 2019;12(1):236. DOI: 10.1186/s13104-019-4265-5.

17. Gomez-Lopez N., Guilbert L.J., Olson D.M. Invasion of the leukocytes into the fetal-maternal interface during pregnancy. J Leukoc Biol. 2010;88(4):625-633. DOI: 10.1189/jlb.1209796.

18. Seidmann L., Suhan T., Kamyshanskiy Y., Nevmerzhitskaya A., Gerein V., Kirkpatrick C.J. CD15 - a new marker of pathological villous immaturity of the term placenta. Placenta. 2014;35(11): 925-931. DOI: 10.1016/j.placenta.2014.07.018.

19. Mirza F.G., Ghulmiyyah L.M., Tamim H., Makki M., Jeha D., Nassar A. To ignore or not to ignore placental calcifications on prenatal ultrasound: a systematic review and meta-analysis. J Matern Fetal Neonatal Med. 2018;31(6):797-804. DOI: 10.1080/14767058.2017.1295443.

20. Schiessl B., Innes B.A., Bulmer J.N., Otun H.A., Chadwick T.J., Robson S.C., Lash G.E. Localization of angiogenic growth factors and their receptors in the human placental bed throughout normal human pregnancy. Placenta. 2009;30(1):79-87. DOI: 10.1016/j.placenta.2008.10.004.

21. Madhi S.A., Briner C., Maswime S., Mose S., Mlandu P., Chawana R., Wadula J., Adam Y., et al. Causes of stillbirths among women from South Africa: a prospective, observational study. Lancet Glob Health. 2019;7(4):e503-e512. DOI: 10.1016/S2214-109X(18)30541-2.

22. Man J., Hutchinson J.C., Heazell A.E., Ashworth M., Jeffrey I., Sebire N.J. Stillbirth and intrauterine fetal death: role of routine histopathological placental findings to determine cause of death. Ultrasound Obstet Gynecol. 2016;48(5):579-584. DOI: 10.1002/uog.16019.

23. Ferretti C., Bruni L., Dangles-Marie V., Pecking A.P., Bellet D. Molecular circuits shared by placental and cancer cells, and their implications in the proliferative, invasive and migratory capacities of trophoblasts. Hum Reprod Update. 2007;13(2):121-141. DOI: 10.1093/humupd/dml048.

24. Giakoumelou S., Wheelhouse N., Cuschieri K., Entrican G., Howie S.E., Horne A.W. The role of infection in miscarriage. Hum Reprod Update. 2016;22(1): 116-133. DOI: 10.1093/humupd/dmv041.

25. Greco M.A., Wieczorek R., Sachdev R., Kaplan C., Nuovo G.J., Demopoulos R.I. Phenotype of villous stromal cells in placentas with cytomegalovirus, syphilis, and nonspecific villitis. Am J Pathol. 1992;141(4):835-842.